Zusammenhang zwischen der Expositionszeit mit gepulsten elektromagnetischen Feldern und dem Anstieg der Zellproliferation in humanen Osteosarkom-Zelllinien und normalen humanen Osteoblasten in vitro.

Ja, die Rechtschreibung ist korrekt. Hier ist die überarbeitete Übersetzung mit minimalen Anpassungen für noch bessere Lesbarkeit:


Es wurden kultivierte Knochenzellen unterschiedlichen Zeiten lang einem gepulsten elektromagnetischen Feld (PEMF) ausgesetzt, um die minimale Expositionszeit zu bestimmen, die notwendig ist, um eine Erhöhung der DNA-Synthese zu stimulieren. Wir verwendeten zwei verschiedene humane Osteosarkom-Zelllinien, TE-85 und MG-63, sowie normale humane Osteoblasten (NHOC), die aus chirurgischen Knochenproben gewonnen wurden. Die Zellen wurden in Mehrfachvertiefungsplatten in einem Gewebekultur-Inkubator zwischen einem Paar Helmholtz-Spulen platziert, die von einem Pulsgenerator (1,3-ms-Puls, wiederholt mit 75 Hz) betrieben wurden, und für verschiedene Zeiträume exponiert. Die [3H]Thymidin-Inkorporation wurde verwendet, um die Zellproliferation zu bewerten.

Die beiden Osteosarkom-Zelllinien erhöhten ihre Thymidin-Inkorporation, wenn sie mindestens 30 Minuten lang einem PEMF ausgesetzt wurden, sowohl in einem Medium mit 10% fetalem Kälberserum als auch in einem serumfreien Medium. Es ist bekannt, dass NHOC ihre Zellproliferation erhöhen, wenn sie PEMF ausgesetzt werden, jedoch nur, wenn sie in Anwesenheit von 10% fetalem Kälberserum kultiviert werden. Unter dieser experimentellen Bedingung erforderten drei der vier untersuchten Zelllinien mindestens 9 Stunden PEMF-Exposition, um ihre DNA-Synthese zu erhöhen, während eine Zelllinie ihre Zellproliferation nach 6 Stunden PEMF-Exposition erhöhte.

Die Beobachtungen bestätigen die Hypothese, dass die proliferativen Reaktionen von NHOC und humanen Osteosarkom-Zelllinien auf PEMF-Exposition recht unterschiedlich sind. Darüber hinaus benötigten NHOC minimale Expositionszeiten zu PEMF, um ihre Zellproliferation zu erhöhen, ähnlich wie die Zeiten, die erforderlich sind, um die Knochenbildung in vivo zu stimulieren.